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          藍(lán)景科信DAP-SEQ(DNA親和純化測(cè)序)技術(shù)服務(wù)常見(jiàn)問(wèn)題

          更新時(shí)間:2021-03-22   點(diǎn)擊次數(shù):3919次

          DAP-SEQ技術(shù)簡(jiǎn)介
          DAP-SEQ是基于DNA親和純化,通過(guò)體外表達(dá)轉(zhuǎn)錄因子鑒定TFBS的技術(shù),具有不受抗體和物種限制,且高通量的優(yōu)勢(shì),自該技術(shù)問(wèn)世以來(lái),已被廣泛應(yīng)用于轉(zhuǎn)錄調(diào)控和表觀組學(xué)的研究。

          那么關(guān)于DAP-SEQ都有哪些問(wèn)題需要關(guān)注呢?

          1. DAP-seq原理、技術(shù)流程,能解決什么樣的問(wèn)題?
          原理:體外表達(dá)的蛋白和DNA進(jìn)行親和純化,將與蛋白結(jié)合的DNA洗脫后進(jìn)行高通量測(cè)序。
          技術(shù)流程:將編碼轉(zhuǎn)錄因子的CDS序列構(gòu)建到含有親和標(biāo)簽的載體中,構(gòu)建蛋白表達(dá)載體,進(jìn)行體外蛋白表達(dá),形成轉(zhuǎn)錄因子和親和標(biāo)簽的融合蛋白;提取樣品的基因組DNA,構(gòu)建DNA文庫(kù),然后將體外表達(dá)的帶有親和標(biāo)簽的轉(zhuǎn)錄因子和DNA文庫(kù)進(jìn)行結(jié)合,隨后把結(jié)合的DNA洗脫后上機(jī)測(cè)序。
          能幫助您快速找到轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合位點(diǎn),尋找轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控的靶基因。

          服務(wù)流程:

          DAP-SEQ實(shí)驗(yàn)流程
           

          2. 需要提供什么材料?
          需要您提供:
          (1)組織材料或者是提取好的基因組DNA;
          (2)含有轉(zhuǎn)錄因子CDS序列的質(zhì)粒。

          3. 分析結(jié)果包括哪些內(nèi)容?
          藍(lán)景科信DAP-seq的生信分析包括以下內(nèi)容:
          1.對(duì)原始數(shù)據(jù)進(jìn)行去除接頭、污染序列及低質(zhì)量 reads 的處理
          2.數(shù)據(jù)產(chǎn)出統(tǒng)計(jì)
          3.參考序列比對(duì)分析
          4.測(cè)序reads富集區(qū)域掃描(peak calling)
          5.Peak長(zhǎng)度分布統(tǒng)計(jì)
          6.Peak在基因功能元件上的分布統(tǒng)計(jì)
          7.Peak序列模式發(fā)掘(motif search)
          8.已知motif注釋
          9.Peak相關(guān)基因鑒定
          10.Peak相關(guān)基因的GO和KEGG富集分析
          11.測(cè)序數(shù)據(jù)的差異分析(>=2個(gè)樣本)
          12.測(cè)序數(shù)據(jù)的可視化分析

          4.實(shí)驗(yàn)的成功率怎么樣?
          不同轉(zhuǎn)錄因子家族的成功率不同,請(qǐng)參考不同轉(zhuǎn)錄因子家族的DAP-seq成功率:

          在這里插入圖片描述
          5. 為什么有些基因家族的成功率很低?
          有些轉(zhuǎn)錄因子需要和其他蛋白形成復(fù)合體才能與DNA結(jié)合,這些蛋白的風(fēng)險(xiǎn)比較高。

          6. 一些特殊的樣品能不能做,有沒(méi)有風(fēng)險(xiǎn)?
          有兩種情況的樣品是不能做DAP-seq 實(shí)驗(yàn)的,一種情況是沒(méi)有參考基因組,另一種情況是轉(zhuǎn)錄因子不能在體外表達(dá)出來(lái),除此之外,我們會(huì)做可行性分析報(bào)告供您參考。

          7. 包含重復(fù)嗎?
          包含兩個(gè)技術(shù)重復(fù)。

          8. 做這個(gè)蛋白表達(dá)的時(shí)候,使用的什么表達(dá)系統(tǒng)?
          優(yōu)先使用真核表達(dá)系統(tǒng)進(jìn)行蛋白表達(dá),如果真核表達(dá)系統(tǒng)不能表達(dá)成功的話可以溝通換用原核表達(dá)系統(tǒng)。

          9. 植物組織樣本取樣的時(shí)期部位有什么要求?
          植物組織樣本取樣的時(shí)期和部位是您根據(jù)自己的研究需求確定,不同組織和時(shí)期DNA的修飾不同,可能會(huì)影響蛋白和DNA的結(jié)合。

          10. DAP-seq跟ChIP-seq有何區(qū)別,DAP-seq的優(yōu)勢(shì)表現(xiàn)在哪里?
          DAP-seq和ChIP-seq的區(qū)別:

          在這里插入圖片描述

          DAP-seq的優(yōu)勢(shì):不需要針對(duì)每個(gè)轉(zhuǎn)錄因子制備特異性抗體,快速、高通量、節(jié)約時(shí)間成本。

          11. DAP-seq用的input是什么,為什么選這個(gè)作為對(duì)照呢?
          Input對(duì)照是用的親和純化前的文庫(kù),目的是降低背景噪音,我們用的Input和2016年發(fā)表在Cell(DAP Seq-Cistrome and Epicistrome Features Shape the Regulatory DNA Landscape)上的論文是一致的。

          12. 為什么實(shí)驗(yàn)中表達(dá)的有些蛋白比理論值偏大?
          很多蛋白表達(dá)出來(lái)比理論值大一些,因?yàn)橛幸恍┓g后修飾,很多情況都是這樣的,原核表達(dá)也有這類(lèi)情況,比如擬南芥SnRK蛋白激酶,預(yù)測(cè)40 kd,通過(guò)原核表達(dá),實(shí)際分子量是60 kd。

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